动物实验与细胞实验方案:放线菌酮(Cycloheximide,NSC-185)——靶向真核翻译延伸的关键抑制剂 别名:Actidione、Naramycin A、CHX、FT 3422-2、NM-MCD 80;化学名:环己酰亚胺;广谱抗真菌抗生素,特异性识别并稳定结合真核80S核糖体的60S亚基,高效阻滞转肽过程(CAS号:66-81-9;货号:D807418)
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环己酰亚胺(Cycloheximide, CHX)是一种抗真菌抗生素,通过阻断真核细胞的蛋白质合成发挥其广谱活性,是分子生物学研究中常用的一种转录翻译抑制剂。
1. 概述
环己酰亚胺,又称“放线菌酮”,是一种由链霉菌(Streptomyces griseus)产生的天然化合物。其编号为CAS 66-81-9,分子式C₁₅H₂₃NO₄,分子量为281.35。由于其良好的溶解性(可溶于DMSO(100mM)、乙醇(50mM)和水(25mM)),被广泛用于实验室研究。
2. 作用机制
·靶点与效应:CHX是一种特异性的真核生物蛋白质合成抑制剂,但对原核生物无效。其作用靶点位于核糖体的60S亚基,通过在蛋白质翻译的延伸阶段干扰“易位”步骤,阻止信使RNA(mRNA)的移动,从而不可逆地阻断新生肽链的延伸。
·抑制活性数据:在众多研究中,CHX的活性得到了量化:
o蛋白质合成:体内实验的半数抑制浓度(IC₅₀)为532.5 nM。
oRNA合成:在抑制蛋白质合成的高浓度下,CHX也能对RNA合成产生二次效应,其IC₅₀为2880 nM。
o其他活性:它还对多种细胞系有抑制作用,例如对人T细胞白血病细胞CEM的IC₅₀为0.12 μM。
3. 功能与应用
CHX的作用是快速且可逆的,移除药物即可恢复蛋白质合成,这使其成为研究蛋白质功能和调控的强大工具。
应用领域 | 具体用途 | 简要原理 |
蛋白质半衰期测定 | CHX追踪实验(Cycloheximide chase assay) | 加入CHX全局阻断新蛋白合成后,通过Western Blot等技术追踪某一特定蛋白随时间的衰减,从而计算其降解速率。 |
超诱导研究 | 超级诱导(Super-induction) | 通过抑制大多数“短寿命”抑制性蛋白的合成,相对地延长某些“长寿命”靶蛋白的合成时间,从而显著提高其表达水平。 |
核糖体分析 | 翻译过程“冻结” | CHX能快速将正在翻译的核糖体冻结在mRNA上,这对于核糖体图谱分析(Ribosome profiling)等研究翻译调控的技术至关重要。 |
微生物筛选 | 筛选抗性菌株 | 由于CHX只抑制真核生物,在原核生物中无效,因此常用于酵母和真菌的抗性菌株筛选。 |
细胞凋亡研究 | 诱导或促进细胞凋亡 | CHX本身可作为凋亡诱导剂,或增强肿瘤坏死因子-α(TNF-α)等死亡受体的凋亡信号,用于研究细胞死亡通路。 |
植物学应用 | 植物生长调节剂 | 在农业上,低浓度的CHX曾被用作果实疏果剂或催熟剂,通过刺激乙烯产生来促进果实脱落。 |
4. 实验指导与安全信息
·溶液配制:例如,要配制50 mg/mL的储存液,可取50 mg CHX粉末溶于1 mL溶剂(如乙醇或DMSO)中。溶剂的选择应考虑下游实验的兼容性。
·工作浓度参考范围:
o细胞培养:通常为1 - 10 μg/mL。具体的最佳浓度需通过预实验(如Western Blot)在不同细胞系中进行优化和验证。
o蛋白质半衰期测定:50 - 100 μg/mL。
o酵母筛选:1 - 10 μg/mL。
·安全信息:CHX毒性很强。在使用时必须严格遵守实验室安全规程。
o剧毒:对人类经口致死剂量估计为5-50 mg/kg。
o致癌与生殖毒性:被归类为H341(怀疑会导致遗传缺陷)和H360D(可能会对胎儿造成伤害)。
o安全操作建议:
1.严禁使用移液管口吹吸。
2.接触后,用大量清水和肥皂彻底清洗受污染皮肤。
3.所有接触过CHX的废弃物(如移液器吸头、细胞培养皿)必须作为有毒化学废弃物处理。
4.操作应在化学通风橱内进行,并佩戴适当的手套、实验服和护目镜。
5. 总结
总的来说,环己酰亚胺凭借其独特的真核特异性蛋白合成抑制机制,在生物医学研究中扮演着经典工具试剂的角色。通过有效阻断蛋白质的翻译过程,它被广泛应用于测定蛋白质半衰期、研究翻译调控机制等领域。
以下是环己酰亚胺(CHX)用于动物和细胞实验的方案汇总,并附有关键注意事项。
储存液配制
项目 | 说明 |
溶剂选择 | 常用蒸馏水、PBS或DMSO。不建议使用浓度过高的有机溶剂直接处理细胞,必要时用培养基稀释至工作浓度。 |
常用储存液浓度 | - 用于细胞实验:建议配制成10 mg/mL的储存液,过滤除菌后分装冻存。 |
- 用于CHX追踪实验:可用蒸馏水配制成0.1 mol/L的储存液,-20℃保存;如不溶可微热至40℃助溶。 | |
- 用于动物实验:用0.9%生理盐水新鲜配制,现配现用。参考浓度:0.4 mg/mL。 | |
工作浓度参考 | -细胞培养:常用10~100 μg/mL。 |
-CHX追踪测定:常用35 μg/mL或50~100 μg/mL。 | |
-筛选抗性酵母/真菌:1~10 μg/mL。 |
CHX作用迅速,加入培养基后几乎立即起效。确认抑制效果可采用放射性标记氨基酸掺入试验(如³⁵S-甲硫氨酸脉冲、TCA沉淀法)。仅依赖考马斯亮蓝染色全细胞裂解物灵敏度不足。如涉及DMSO,其在终体系中的体积分数不宜过高(通常<0.1%)。
细胞实验方案
1. CHX追踪法测定蛋白质半衰期
该方法通过阻断新蛋白合成来追踪特定蛋白随时间衰减的速率,是研究蛋白质降解动力学的经典手段。
基本步骤:
·细胞准备:培养贴壁细胞至80–90%融合度(约每孔3,000–5,000个细胞)。
·CHX处理:加入CHX至终浓度35 μg/mL(或通过预实验确定最佳浓度),开始计时。
·样本收集:在0、2、4、6、8小时等不同时间点收集细胞,用PBS洗涤后裂解。裂解液可经4℃、15,000g离心5–15 min去除不溶物。
·检测与定量:通过SDS-PAGE分离蛋白质,利用目标蛋白特异性抗体进行Western Blot检测。扫描条带灰度值,绘制衰减曲线,计算半衰期。
**注意事项**:建议同时检测稳定表达的蛋白(如Tubulin, Actin)作为上样内参。所测半衰期取决于蛋白本身的降解速率,不同蛋白差异很大。
2. CHX在细胞培养中的通用方案
实验目的 | 推荐浓度 | 处理时间 | 参考文献 |
抑制新蛋白合成 | 10–100 μg/mL(常用35 μg/mL) | 5–10 min 至数小时 | |
蛋白质半衰期测定 | 50–100 μg/mL(或35 μg/mL) | 0–8 小时(逐时取样) | |
细胞生长停滞(一般用途) | 35–50 μg/mL | 持续处理,取决于实验目标 | |
快速翻译“冻结”(如核糖体分析) | 100 μg/mL | 加入后立即进入后续流程 | |
抑制真核翻译(制备粗微体) | 10 μmol/L(≈2.8 μg/mL) | 5–10 min | |
筛选抗CHX酵母/真菌菌株 | 1–10 μg/mL | 持续培养筛选 | |
诱导细胞凋亡 | 1–20 μg/mL | 数小时至24小时 |
CHX抑制蛋白质合成通常为**不可逆**作用。处理时间过长或浓度过高可能导致细胞毒性,宜根据实验目标和细胞类型进行优化。
3. 测定CHX对细胞增殖的影响
方法示例:HeLa、Jurkat等细胞悬液按每孔3,000–5,000个接种于96孔板,过夜贴壁。第二天加入0.1 nM–1000 μM的CHX(DMSO溶解),继续培养24小时。每孔加入1 μCi ³H-胸苷,继续孵育7小时。用多孔收集器将细胞收集于滤膜,闪烁计数测定胸苷掺入量。
动物实验方案
特殊应用中的小鼠给药参数汇总
实验类型 | 动物品系 | 剂量范围 | 给药途径 | 给药时机与频次 |
记忆巩固障碍模型 | 昆明小鼠 | 120–150 mg/kg | i.p. | 训练后立即或训练前10 min/30 min,单次注射 |
被动回避记忆研究 | C57BL/6J | 失忆剂量150 mg/kg;亚失忆剂量30 mg/kg;二次追加15–75 mg/kg | i.p. | 训练后0、30 min或1 h注射 |
抑制脑蛋白质合成(评估) | ICR小鼠 | 30 mg/kg抑制约80%脑蛋白合成 | i.p. | 注射后30–60 min测定 |
艾利希腹水癌细胞研究 | 常规小鼠品系 | 30–60 μg/g(即30–60 mg/kg) | i.p. / i.v. | 肿瘤细胞注射前后2–18 h给药 |
免疫调节研究 | 白色小鼠 | 12.5, 25, 50 mg/kg | i.p. / i.v. | 按注射次数给药(周期依实验而定) |
腹膜腔给药(常规参考) | 常规小鼠品系 | 0.2 mg/110 g(约1.82 mg/kg) | i.p. | 单次注射,持续观察5–10天 |
口服给药(长期低剂量) | SD大鼠 | 0.25 mg/kg | 口服灌胃 | Daily,持续5天 |
癫痫模型(匹罗卡品) | SD大鼠 | 1 mg/kg | i.p. | PILO给药前30–45 min单次注射 |
淋巴吸收研究 | SD大鼠 | 0.5 mg/kg(药代);2.5 mg/kg(药效) | oral / i.p. / i.v. | 与脂质或药物联合给药,单次或少量多次 |
植入研究/妊娠研究 | SD大鼠 | 1 mg/kg | i.p. | 人工蜕膜诱导后立即,或妊娠第4天晚上/第5天早上单次注射 |
**备注**:i.p. = 腹腔注射;i.v. = 静脉注射;oral = 口服。
一般性给药建议
动物模型 | 常用剂量 (参考) | 给药途径 | 典型用途 | 效果参考 |
小鼠(Mus musculus) | 30–120 mg/kg | i.p. | 记忆研究、蛋白合成抑制、毒性评估 | 蛋白合成抑制80–95% |
小鼠(短期处理/低毒性) | 1–10 mg/kg | i.p. / oral | 特定组织功能研究、免疫调节 | 低毒或无可见毒性 |
大鼠(Rattus norvegicus) | 0.25–2.5 mg/kg | oral / i.p. / i.v. | 药代动力学、淋巴吸收、胚胎植入研究 | 有效抑制蛋白合成,淋巴吸收降低24–40% |
关键注意事项
1.物种特异性:小鼠与大鼠对CHX的敏感性相差悬殊。抑制大鼠蛋白合成所需的CHX剂量(1–3 mg/kg)远低于小鼠,导致遗忘所需的剂量也比小鼠低得多。大鼠的LD50值也远低于小鼠,在借鉴文献剂量时务必核实动物品系。
2. **肝毒性**:即使是相对中低剂量(如2.5 mg/kg),CHX也能引起血浆脂质显著降低(24–40%),并可能伴有炎症反应和肝酶升高(如ALT/AST),且在给药后仍可持续一周。
3. **记忆效应与剂量**:CHX诱导遗忘并非简单的剂量依赖关系,有时呈倒U型曲线。30 mg/kg的低剂量可能足以增强记忆,而更高剂量(如120 mg/kg)反而产生遗忘。给药时机(训练前、训练后立即、训练后30 min或1 h)也显著影响效果。建议将CHX作为干预剂时开展剂量−效果预实验。
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存储建议
·粉末状:-20℃保存,通常可稳定3年。
·储存液(溶剂):-80℃保存,通常可稳定6个月以上。分装避免反复冻融。


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